YOSHIHIRO IZUMI

2015.04.08

和泉 自泰 (いずみ よしひろ) : 准教授

メタボロミクスは俯瞰的視点から原因遺伝子と代謝の関連性を広く見出せることからその利用価値が格段に高まってきています．近年，医学研究においても，メタボロミクスは疾患代謝研究やバイオマーカー探索に応用されるようになってきました．当研究室では，細胞内の代謝情報を高精度に観測するために，種々のクロマトグラフと質量分析計を駆使した高感度かつ定量的な汎用メタボローム分析法を開発しております．また，シングルセルメタボロミクスに向けた基盤技術の開発にも積極的に取り組んでおります．我々は開発した分析法を基に疾患と代謝の関連性について基礎から応用までの幅広い研究を展開しております．

E-mail : izumi[atmark]bioreg.kyushu-u.ac.jp
電話 : 092-642-6171
専門分野 : メタボロミクス，オミクス解析，1細胞解析，機能的代謝解析，質量分析，クロマトグラフィー
出身地 : 香川県
趣味 : サッカー，フットサル，音楽鑑賞，映画鑑賞，質量分析

経歴

2010年3月　大阪大学大学院工学研究科生命先端工学専攻　学位取得 博士 (工学)
2010年4月　神戸大学大学院工学研究科応用化学専攻　博士研究員
2011年9月　神戸大学大学院医学研究科消化器内科学講座　特命助教
2013年4月　大阪大学大学院工学研究科生命先端工学専攻　特任助教
2015年4月～現在　九州大学生体防御医学研究所メタボロミクス分野　准教授

その他職歴

2015年4月～現在　大阪大学大学院工学研究科生物工学専攻　招へい准教授

所属学会

  • 日本質量分析学会 (The Mass Spectrometry Society of Japan)
  • 日本生物工学会 (The Society for Biotechnology, Japan)
  • 日本生化学会 (The Japanese Biochemical Society)
  • 日本農芸化学会 (Japan Society for Bioscience, Biotechnology, and Agrochemistry)
  • クロマトグラフィー科学会 (The Society for Chromatographic Sciences)
  • American Society for Mass Spectrometry
  • SFC研究会 (Japan Society for SFC)

委員

  • 日本生物工学会・メタボロミクス研究部会・委員（2015年～現在）
    日本生物工学会・バイオ計測サイエンス研究部会・委員（2018年～現在）
    日本生物工学会・脂質駆動学術産業創生研究部会・委員（2019年～現在）
  • SFC研究会・コアメンバー (2015年~)

原著論文

Google scholar

researchmap

  1. Narukawa Y#, Sugiyama N#, Miura J, Yamashita R, Tominaga S, Izumi Y, Bamba T, Ishihama Y, Kashiwagi Y#*, Murakami S*.
    Chronic hyperglycemia reduces the expression of intercellular adhesion molecules and increases intercellular hyperpermeability in the periodontal epithelium.
    J. Periodontal Res., 58(4), 813-826 (2023).
    doi: 10.1111/jre.13140
  2. Fujinuma S, Nakatsumi H, Shimizu H, Sugiyama S, Harada A, Goya T, Tanaka M, Kohjima M, Takahashi M, Izumi Y, Yagi M, Kang D, Kaneko M, Shigeta M, Bamba T, Ohkawa Y, Nakayama KI*.
    FOXK1 promotes nonalcoholic fatty liver disease by mediating mTORC1-dependent inhibition of hepatic fatty acid oxidation.
    Cell Rep., 42(5), Article number 112530 (2023).
    doi: 10.1016/j.celrep.2023.112530
  3. Morikawa T, Takahashi M, Izumi Y, Bamba T, Moriyama K, Hattori G, Fujioka R, Miura S, Shibata H*.
    Oleic acid‑containing phosphatidylinositol is a blood biomarker candidate for SPG28.
    Biomedicines, 11(4), Article number 1092 (2023).
    doi: 10.3390/biomedicines11041092
  4. Yoda M, Mizuno R, Izumi Y, Takahashi M, Bamba T, Kawaoka S*.
    Nicotinamide-N-methyltransferase regulates lipid metabolism via SAM and 1-methylnicotinamide in the AML12 hepatocyte cell line.
    J. Biochem., 174(1), 89-98 (2023).
    doi: 10.1093/jb/mvad028
  5. Morino K#, Kunimura K#*, Sugiura Y, Izumi Y, Matsubara K, Akiyoshi S, Maeda R, Hirotani K, Sakata D, Mizuno S, Takahashi S, Bamba T, Uruno T, Fukui Y*.
    Cholesterol sulfate limits neutrophil recruitment and gut inflammation during mucosal injury.
    Front. Immunol., 14, Article number 1131146 (2023).
    doi: 10.3389/fimmu.2023.1131146
  6. Udo T, Matsuoka Y, Takahashi M, Izumi Y, Saito K, Tazoe K, Tanaka M, Naka H, Bamba T, Yamada KI*.
    Structural analysis of intracellular lipid radicals by LC/MS/MS using a BODIPY-based profluorescent nitroxide probe.
    Anal. Chem., 95(10), 4585-4591 (2023).
    doi: 10.1021/acs.analchem.2c04950
  7. Fujitoa Y, Izumi Y, Nakatani K, Takahashi M, Hayakawa Y, Takayama M, Bamba T*.
    Understanding the mechanism of CO2-assisted electrospray ionization for parameter optimization in supercritical fluid chromatography mass spectrometry.
    Anal. Chim. Acta, 1246, Article number 340863 (2023).
    doi: 10.1016/j.aca.2023.340863
  8. Nakmura J, Yamamoto T*, Takabatake Y, Namba-Hamano T, Minami S, Takahashi A, Matsuda J, Sakai S, Yonishi H, Maeda S, Matsui S, Matsui I, Hamano T, Takahashi M, Goto M, Izumi Y, Bamba T, Sasai M, Yamamoto M, Matsusaka T, Niimura F, Yanagita M, Nakamura S, Yoshimori T, Ballabio A, Isaka Y.
    TFEB-mediated lysosomal exocytosis alleviates high fat diet–induced lipotoxicity in the kidney.
    JCI Insight, 8(4), Article number e162498 (2023).
    doi: 10.1172/jci.insight.162498
  9. Shimizu T, Schutt C R, Izumi Y, Tomiyasu N, Omahdi Z, Kano K, Takamatsu H, Aoki J, Bamba T, Kumanogoh A, Takao M, Yamasaki S*.
    Direct activation of microglia by β-glucosylceramide causes phagoptosis of neurons that exacerbates Gaucher disease.
    Immunity, 56, 1-13 (2023).
    doi: 10.1016/j.immuni.2023.01.008
  10. Si-Hung L, Izumi Y, Bamba T*.
    First proof-of-concept of UC/HILIC for extending the versatility of the current art of supercritical fluid separation.
    Anal. Chim. Acta, 1240, Article number 340741 (2023).
    doi: 10.1016/j.aca.2022.340741
  11. Taya N, Katakami N*, Ohmori K, Hosoe S, Watanabe H, Takahara M, Miyashita K, Nishizawa H, Konya Y, Obara S, Hidaka A, Nakao M, Takahashi M, Izumi Y, Shimomura I, Bamba T.
    Change in fatty acids composition of plasma triglyceride caused by a 2-week comprehensive risk management for diabetes: A prospective observational study of type 2 diabetes patients with supercritical fluid chromatography/mass spectrometry-based semi-target lipidomic analysis.
    J. Diabetes Investig., 14(1), 102-110 (2023).
    doi: 10.1111/jdi.13924
  12. Nishimura N#, Tomiyasu N#, Torigoe S, Mizuno S, Fukano H, Ishikawa E, Katano H, Hoshino Y, Matsuo K, Takahashi M, Izumi Y*, Bamba T, Akashi K, Yamasaki S*.
    Mycobacterial mycolic acids trigger inhibitory receptor Clec12A to suppress host immune responses.
    Tuberculosis, 138, Article number 102294 (2023).
    doi: 10.1016/j.tube.2022.102294
  13. Nakatani K, Izumi Y*, Takahashi M, Bamba T*.
    Unified-hydrophilic-interaction/anion-exchange liquid chromatography mass spectrometry (unified-HILIC/AEX/MS): A single-run method for comprehensive and simultaneous analysis of polar metabolome.
    Anal. Chem., 94(48), 16877-16866 (2022).
    doi: 10.1021/acs.analchem.2c03986
  14. Morita K#, Wada M#, Nakatani K, Matsumoto Y, Hayashi N, Yamahata I, Mitsunari K, Mukae N, Takahashi M, Izumi Y, Bamba T, Shirane M*.
    PDZD8-deficient mice accumulate cholesteryl esters in the brain as a result of impaired lipophagy.
    iScience, 25(12), Article number 105612 (2022).
    doi: 10.1016/j.isci.2022.105612
  15. Shibata K, Motozono C, Nagae M, Shimizu T, Ishikawa E, Motooka D, Okuzaki D, Izumi Y, Takahashi M, Fujimori N, Wing J B, Hayano T, Asai Y, Bamba T, Ogawa Y, Furutani-Seiki M, Shirai M, Yamasaki S*.
    Symbiotic bacteria-dependent expansion of MR1-reactive T cells causes pancreatitis in the absence of Bcl11b in lymphocytes.
    Nat. Commun., 13(1), Article number 6948 (2022).
    doi: 10.1038/s41467-022-34802-8
  16. Soma Y#, Izumi Y#, Shimohira T, Takahashi M, Imado Y, Tominaga S, Tokito K, Hata K, Shinadama S, Oshiro M, Hayakawa Y, Bamba T*.
    In-needle pre-column derivatization for amino acid quantification (iPDAQ) using HPLC.
    Metabolites, 12(9), Article number 807 (2022).
    doi: 10.3390/metabo12090807
  17. Kunduri G*, Si-Hung L, Valentina B, Vijaykrishna N, Harned A, Nagashima K, Blankenberg D, Izumi Y, Narayan K, Bamba T, Acharya U*, Acharya J K*.
    Delivery of ceramide phosphoethanolamine lipids to the cleavage furrow through the endocytic pathway is essential for male meiotic cytokinesis.
    PLoS Biol., 20(9), Article number e3001599 (2022).
    doi: 10.1371/journal.pbio.3001599
  18. Konya Y, Izumi Y, Hamase K, Bamba T*.
    Ultrafast simultaneous chiral analysis of native amino acid enantiomers using supercritical fluid chromatography/tandem mass spectrometry.
    J. Chromatogr. A, 1677, Article number 463305 (2022).
    doi: 10.1016/j.chroma.2022.463305
  19. Mizuno R, Hojo H, Takahashi M, Kashio S, Enya S, Nakao M, Konishi R, Yoda M, Harata A, Hamanishi J, Kawamoto H, Mandai M, Suzuki Y, Miura M, Bamba T, Izumi Y, Kawaoka S*.
    Remote solid cancers rewire hepatic nitrogen metabolism via host nicotinamide-N-methyltransferase.
    Nat. Commun., 13(1), Article number 3346 (2022).
    doi: 10.1038/s41467-022-30926-z
  20. Tatsuguchi T#, Uruno T#*, Sugiura Y, Oisaki K, Takaya D, Sakata D, Izumi Y, Togo T, Hattori Y, Kunimura K, Sakurai T, Honma T, Bamba T, Nakamura M, Kanai M, Suematsu M, Fukui Y*.
    Pharmacological intervention of cholesterol sulfate-mediated T cell exclusion promotes antitumor immunity.
    Biochem. Biophys. Res. Commun., 609, 183-188 (2022).
    doi: 10.1016/j.bbrc.2022.04.035
  21. Mise S#, Matsumoto A#*, Shimada K, Hosaka T, Takahashi M, Ichihara K, Shimizu H, Shiraishi C, Saito D, Suyama M, Yasuda T, Ide T, Izumi Y, Bamba T, Kimura-Someya T, Shirouzu M, Miyata H, Ikawa M, Nakayama KI*.
    Kastor and Polluks polypeptides encoded by a single gene locus cooperatively regulate VDAC and spermatogenesis.
    Nat. Commun., 13(1), Article number 1071 (2022).
    doi: 10.1038/s41467-022-28677-y
  22. Tatsuguchi T#, Uruno T#*, Sugiura Y, Sakata D, Izumi Y, Sakurai T, Hattori Y, Oki E, Kubota N, Nishimoto K, Oyama M, Kunimura K, Ohki T, Bamba T, Tahara H, Sakamoto M, Nakamura M, Suematsu M, Fukui Y*.
    Cancer-derived cholesterol sulfate is a key mediator to prevent tumor infiltration by effector T cells.
    Int. Immunol., 34(5), 277-289 (2022).
    doi: 10.1093/intimm/dxac002
  23. Otsuka H, Yokomizo H*, Nakamura S, Izumi Y, Takahashi M, Obara S, Nakao M, Ikeda Y, Sato N, Sakamoto R, Miyachi Y, Miyazawa T, Bamba T, Ogawa Y*.
    Differential effect of canagliflozin, a sodium-glucose cotransporter (SGLT2) inhibitor, on slow and fast skeletal muscles from nondiabetic mice.
    Biochem. J., 479(3), 425-444 (2022).
    doi: 10.1042/BCJ20210700
  24. Si-Hung L, Izumi Y, Nakao M, Takahashi M, Bamba T*.
    Investigation of supercritical fluid chromatography retention behaviors using quantitative structure-retention relationships.
    Anal. Chim. Acta, 1197, 339463 (2022).
    doi: 10.1016/j.aca.2022.339463
  25. Yamauchi T, Miyawaki K, Semba Y, Takahashi M, Izumi Y, Nogami J, Nakao F, Sugio T, Sasaki K, Pinello L, Bauer DE, Bamba T, Akashi K, Maeda T*.
    Targeting leukemia-specific dependence on the de novo purine synthesis pathway.
    Leukemia, 36(2), 383-393 (2022).
    doi: 10.1038/s41375-021-01369-0
  26. Nishiumi S#*, Izumi Y#*, Hirayama A#*, Takahashi M, Nakao M, Hata K, Saigusa D, Hishinuma E, Matsukawa N, M Tokuoka S, Kita Y, Hamano F, Okahashi N, Ikeda K, Nakanishi H, Saito K, Yokota Hirai M, Yoshida M, Oda Y, Matsuda F, Bamba T.
    Comparative evaluation of plasma metabolomic data from multiple laboratories.
    Metabolites, 12(2), 135 (2022).
    doi: 10.3390/metabo12020135
  27. Soma Y#, Takahashi M#, Fujiwara Y, Tomiyasu N, Goto M, Hanai T, Izumi Y, Bamba T*.
    Quantitative metabolomics for dynamic metabolic engineering using stable isotope labeled internal standards mixture (SILIS).
    J. Biosci. Bioeng., 133(1), 46-55 (2022).
    doi: 10.1016/j.jbiosc.2021.09.009
  28. Watanabe H, Usami R, Kishino S, Osada K, Aoki Y, Morisaka H, Takahashi M, Izumi Y, Bamba T, Aoki W, Suganuma H, Ogawa J*.
    Enzyme systems involved in glucosinolate metabolism in Companilactobacillus farciminis KB1089.
    Sci. Rep., 11(1), 23715 (2021).
    doi: 10.1038/s41598-021-03064-7
  29. Yamauchi K, Matsuoka Y, Takahashi M, Izumi Y, Taniguchi Y, Kawai K, Bamba T, Yamada KI*.
    Detection and structural analysis of pyrimidine-derived radicals generated on DNA using a profluorescent nitroxide probe.
    Chem. Commun., 58(1), 56-59 (2021).
    doi: 10.1039/d1cc04998d
  30. Matsuoka Y, Takahashi M, Sugiura Y, Izumi Y, Nishiyama K, Nishida M, Suematsu M, Bamba T, Yamada KI*.
    Structural library and visualization of endogenously oxidized phosphatidylcholines using mass spectrometry-based techniques.
    Nat. Commun., 12(1), Article number 6339 (2021).
    doi: 10.1038/s41467-021-26633-w
  31. Saigusa D*, Hishinuma E, Matsukawa N, Takahashi M, Inoue J, Tadaka S, Motoike I N, Hozawa A, Izumi Y, Bamba T, Kinoshita K, Ekroos K, Koshiba S, Yamamoto M.
    Comparison of kit-based metabolomics with other methodologies in a large cohort, towards establishing reference values.
    Metabolites, 11(10), 652 (2021).
    doi: 10.3390/metabo11100652
  32. Kashiwagi Y#, Aburaya S#, Sugiyama N#, Narukawa Y, Sakamoto Y, Takahashi M, Uemura H, Yamashita R, Tominaga S, Hayashi S, Nozaki T, Yamada S, Izumi Y, Kashiwagi A, Bamba T, Ishihama Y, Murakami S*.
    Porphyromonas gingivalis induces entero-hepatic metabolic derangements with alteration of gut microbiota in a type 2 diabetes mouse model.
    Sci. Rep., 11(1), 18398 (2021).
    doi: 10.1038/s41598-021-97868-2
  33. Ikeda K#, Takahashi M#, Aburaya S, Harada D, Ikeda M, Kitagawa Y, Soma Y, Izumi Y, Bamba T, Furuse M*.
    Produced β-hydroxybutyrate after β-hydroxy-β-methylbutyrate (HMB) administration may contribute HMB function in mice.
    Biochem. Biophys. Rep., 27, 101097 (2021).
    doi: 10.1016/j.bbrep.2021.101097
  34. Dispas A*, Clarke A, Perrenoud A G-G, Losacco L G, Veuthey J-L, Gros Q, Molineau J, Noireau A, West C, Salafia F, Zoccali M, Mondello L, Guillen A, Wang J, Zhang K, Jochems P, Schad G, Horie S, Joseph J, Parr M K, Billemont P, Severino A, Schneider S, Naegele1 E, Kutscher D, Wikfors R, Black R, Ingvaldson L, Silva J O D, Bennett R,Regalado E L, Hoang T P T, Touboul D, Nikolova Y, Kamenova-Nacheva M, Dimitrov V, Berger B K, Schug K A, Kerviel-Guillon S, Mauge F, Takahashi M, Izumi Y, Bamba T, Rouvière F, Heinisch S, Guillarme D, Hubert P.
    Interlaboratory study of a supercritical fluid chromatography method for the determination of pharmaceutical impurities: evaluation of multi-systems reproducibility.
    J. Pharm. Biomed. Anal., 203, 114206 (2021).
    doi: 10.1016/j.jpba.2021.114206
  35. Soma Y, Takahashi M, Fujiwara Y, Shinohara T, Izumi Y, Hanai T*, Bamba T*.
    Design of synthetic quorum sensing achieving induction timing-independent signal stabilization for dynamic metabolic engineering of E. coli.
    ACS Synth. Biol., 10(6), 1384-1393 (2021).
    doi: 10.1021/acssynbio.1c00008
  36. Hara T, Baron G V, Hata K, Izumi Y, Bamba T*, Desmet G*.
    Performance of functionalized monolithic silica capillary columns with different mesopore sizes using radical polymerization of octadecyl methacrylate.
    J. Chromatogr. A, 1651, 462282 (2021).
    doi: 10.1016/j.chroma.2021.462282
  37. Onoki T, Izumi Y, Takahashi M, Murakami S, Matsumaru D, Ohta N, Wati SM, Hatanaka N, Katsuoka F, Okutsu M, Yabe Y, Hagiwara Y, Kanzaki M, Bamba T, Itoi E, Motohashi H*.
    Skeletal muscle-specific Keap1 disruption modulates fatty acid utilization and enhances exercise capacity in female mice.
    Redox Biol., 43, 101966 (2021).
    doi: 10.1016/j.redox.2021.101966
  38. Hata K#, Soma Y#, Yamashita T, Takahashi M, Sugitate K, Serino T, Miyagawa H, Suzuki K, Yamada K, Kawamukai T, Shiota T, Izumi Y*, Bamba T*.
    Calibration-curve-locking database for semi-quantitative metabolomics by gas chromatography/mass spectrometry.
    Metabolites, 11(4), 207 (2021).
    doi: 10.3390/metabo11040207
  39. Chen Y-Y#, Soma Y#, Ishikawa M#, Takahashi M, Izumi Y, Bamba T, Hori K*.
    Metabolic alteration of Methylococcus capsulatus str. Bath during a microbial gas-phase reaction.
    Bioresour. Technol., 330, 125002 (2021).
    doi: 10.1016/j.biortech.2021.125002
  40. Morikawa T, Ohishi H, Kosaka K, Shimojo T, Nagano A, Taniguchi I, Fujioka R, Moriyama K, Unoki M, Takahashi M, Nakao M, Izumi Y, Bamba T, Sasaki H, Miura S, Shibata H*.
    Ddhd1 knockout mouse as a model of locomotive and physiological abnormality in familial spastic paraplegia.
    Biosci. Rep., 41(2), BSR20204171 (2021).
    doi: 10.1042/BSR20204171
  41. Tanaka K*, Sasayama T, Nagashima H, Irino Y, Takahashi M, Izumi Y, Uno T, Satoh N, Kitta A, Kyotani K, Fujita Y, Hashiguchi M, Nakai T, Kohta M, Uozumi Y, Shinohara M, Hosoda K, Bamba T, Kohmura E.
    Glioma cells require one-carbon metabolism to survive glutamine starvation.
    Acta Neuropathol. Commun., 9, Article number 16 (2021).
    doi: 10.1186/s40478-020-01114-1
  42. Yamamoto T, Takabatake Y*, Minami S, Takahashi A, Sakai S, Fujimura R, Takahashi A, Namba-Hamano T, Matsuda J, Kimura T, Matsui I, Kaimori J, Takeda H, Takahashi M, Izumi Y, Bamba T, Matsusaka T, Niimura F, Yanagita M, Isaka Y.
    Eicosapentaenoic acid attenuates renal lipotoxicity by restoring autophagic flux.
    Autophagy, 17(7), 1700-1713 (2021).
    doi: 10.1080/15548627.2020.1782034
  43. Nagata M, Toyonaga K, Ishikawa E, Haji S, Okahashi N, Takahashi M, Izumi Y, Imamura A, Takato K, Ishida H, Nagai S, Illarionov P, Stocker B L, Timmer M S M, Smith D G M, Williams S J, Bamba T, Miyamoto T, Arita M, Appelmelk B J, Yamasaki S*.
    Helicobacter metabolites exacerbate gastritis through C-type lectin receptors.
    J. Exp. Med., 218(1), e20200815 (2021).
    doi: org/10.1084/jem.20200815
  44. Fushimi T, Izumi Y*, Takahashi M, Hata K, Murano Y, Bamba T.
    Dynamic metabolome analysis reveals the metabolic fate of medium-chain fatty acid in AML12 cells.
    J. Agric. Food Chem., 68(43), 11997-12010 (2020).
    doi: org/10.1021/acs.jafc.0c04723
  45. Konya Y, Izumi Y, Bamba T*.
    Development of a novel method for polar metabolite profiling by supercritical fluid chromatography/tandem mass spectrometry.
    J. Chromatogr. A, 1632, 461587 (2020).
    doi: 10.1016/j.chroma.2020.461587
  46. Matsuoka Y, Izumi Y, Takahashi M, Bamba T, Yamada KI*.
    Method for structural determination of lipid-derived radicals.
    Anal. Chem., 92(10), 6993-7002 (2020).
    doi: 10.1021/acs.analchem.0c00053
  47. Yoshioka T, Izumi Y*, Takahashi M, Suzuki K, Miyamoto Y, Nagatomi Y, Bamba T*.
    Identification of acrylamide adducts generated during storage of canned milk coffee.
    J. Agric. Food Chem., 68, 3859-3867 (2020).
    doi: 10.1021/acs.jafc.9b08139.
  48. Nishida-Aoki N, Izumi Y*, Takeda H, Takahashi M, Ochiya T*, Bamba T.
    Lipidomic analysis of cells and extracellular vesicles from high- and low-metastatic triple-negative breast cancer.
    Metabolites, 10(2), 67 (2020).
    doi: 10.3390/metabo10020067.
  49. Kodama M, Oshikawa K, Shimizu H, Yoshioka S, Takahashi M, Izumi Y, Bamba T, Tateishi C, Tomonaga T, Matsumoto M*, Nakayama KI*.
    A shift in glutamine nitrogen metabolism contributes to malignant progression of cancer.
    Nat. Commun., 11, Article number 1320 (2020).
    doi: 10.1038/s41467-020-15136-9
  50. Takeda H, Izumi Y*, Tamura S, Koike T, Koike Y, Shiomi M, Bamba T.
    Lipid profiling of serum and lipoprotein fractions in response to pitavastatin using an animal model of familial hypercholesterolemia.
    J. Proteome Res., 19(3), 1100-1108 (2020).
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  51. Hata K, Izumi Y*, Hara T, Matsumoto M*, Bamba T.
    In-line sample processing system with an immobilized trypsin-packed fused-silica capillary tube for proteomic analysis of a small number of mammalian cells.
    Anal. Chem., 92(4), 2997-3005 (2020).
    doi: 10.1021/acs.analchem.9b03993
  52. Nakatani K, Izumi Y*, Hata K, Bamba T.
    An analytical system for single-cell metabolomics of typical mammalian cells based on highly sensitive nano-liquid chromatography tandem mass spectrometry.
    Mass Spectrom., 9(1), A0080 (2020).
    doi: 10.5702/massspectrometry.A0080
  53. Matsuda J, Takahashi A, Takabatake Y*, Sakai S, Minami S, Yamamoto T, Fujimura R, Namba-Hamano T, Yonishi H, Nakamura J, Kimura T, Kaimori J, Matsui I, Takahashi M, Nakao M, Izumi Y, Bamba T, Matsusaka T, Niimura F, Yanagita M, Yoshimori T, Isaka Y.
    Metabolic effects of RUBCN/Rubicon deficiency in kidney proximal tubular epithelial cells.
    Autophagy, 16, 1-16 (2020).
    doi: 10.1080/15548627.2020.1712107.
  54. Nishiumi S*, Izumi Y, Kobayashi T, Yoshida M*.
    Possible involvement of lipids in the effectiveness of Kombu in individuals with abnormally high serum triglyceride levels.
    J. Nutr. Sci. Vitaminol., 66, 185-190 (2020).
    doi: org/10.3177/jnsv.66.185
  55. Hara T, Izumi Y, Hata K, Baron G V, Bamba T, Desmet G*.
    Performance of small-domain monolithic silica columns in nano-liquid chromatography and comparison with commercial packed bed columns with 2 μm particles.
    J. Chromatogr. A, 1616, 460804 (2020).
    doi: 10.1016/j.chroma.2019.460804.
  56. Izumi Y, Matsuda F*, Hirayama A, Ikeda K, Kita Y, Horie K, Saigusa D, Saito K, Sawada Y, Nakanishi H, Okahashi N, Takahashi M, Nakao M, Hata K, Hoshi Y, Morihara M, Tanabe K, Bamba T*, Oda Y.
    Inter-laboratory comparison of metabolite measurements for metabolomics data integration.
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    doi: 10.3390/metabo9110257
  57. Nishiumi S*, Izumi Y, Kobayashi T, Yoshida M*.
    A pilot study: Effects of Kombu intake on lifestyle-related diseases, Possibility that an intake of Kombu is effective for the subjects with abnormally high serum triglyceride levels.
    Food Sci. Technol. Res., 25(6), 827-834 (2019).
    doi: org/10.3136/fstr.25.827
  58. Hirose T*, Keck D, Izumi Y, Bamba T.
    Comparison of retention behavior between supercritical fluid chromatography and normal-phase high performance liquid chromatography with various stationary phases.
    Molecules, 24(13), 2425 (2019).
    doi: org/10.3390/molecules24132425
  59. Takeda H, Takahashi M, Hara T, Izumi Y, Bamba T*.
    Improved quantitation of lipid classes using supercritical fluid chromatography with charged aerosol detector.
    J. Lipid Res., 60(8), 1465-1474 (2019).
    doi: 10.1194/jlr.D094516.
  60. Yoshioka T, Izumi Y, Nagatomi Y, Miyamoto Y, Suzuki K, Bamba T*.
    A highly sensitive determination method for acrylamide in beverages, grains, and confectioneries by supercritical fluid chromatography tandem mass spectrometry.
    Food Chem., 294, 486-492 (2019).
    doi: 10.1016/j.foodchem.2019.05.033
  61. Shiomi M*, Takeda H, Irino Y, Kimura N, Yamada S, Kuniyoshi N, Kikumori A, Ying Y, Koike T, Yoshida M, Izumi Y, Shinohara M, Bamba T, Ishida T.
    Identification of novel serum markers for the progression of coronary atherosclerosis in WHHLMI rabbits, an animal model of familial hypercholesterolemia.
    Atheroscclerosis, 284, 18-23 (2019).
    doi: 10.1016/j.atherosclerosis.2019.02.020.
  62. Hara T, Izumi Y, Nakao M, Hata K, Baron G V, Bamba T, Desmet G*.
    Silica-based hybrid porous layers to enhance the retention and efficiency of open tubular capillary columns with a 5 μm inner diameter.
    J. Chromatogr. A, 1580, 63-71 (2018).
    doi: 10.1016/j.chroma.2018.10.023.
  63. Kunduri G, Turner-Evans D, Konya Y, Izumi Y, Nagashima K, Lockett S, Holthuis J, Bamba T, Acharya U, Acharya J K.*
    A defective cortex glia plasma membrane structure underlies light-induced epilepsy in cpes mutants.
    Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 115(38), E8919-E8928 (2018).
    doi: 10.1073/pnas.1808463115
  64. Takahashi M, Izumi Y*, Iwahashi F, Nakayama Y, Iwakoshi M, Nakao M, Yamato S, Fukusaki E, Bamba T*.
    Highly accurate detection and identification methodology of xenobiotic metabolites using stable isotope labeling, data mining techniques, and time-dependent profiling based on LC/HRMS/MS.
    Anal. Chem., 90(15), 9068-9076 (2018).
    doi: 10.1021/acs.analchem.8b01388.
  65. Kobori M*, Takahashi Y, Takeda H, Takahashi M, Izumi Y, Akimoto Y, Sakurai M, Oike H, Bamba T, Kimura T.
    Dietary intake of curcumin improves eIF2 signaling and reduces lipid levels in the white adipose tissue of obese mice.
    Sci. Rep., 8, Article number 9081 (2018).
    doi: org/10.1038/s41598-018-27105-w.
  66. Takeda H, Izumi Y (co-first author), Takahashi M, Paxton T, Tamura S, Koike T, Yu Y, Kato N, Nagase K, Shiomi M, Bamba T*.
    Widely-targeted quantitative lipidomics method by supercritical fluid chromatography triple quadrupole mass spectrometry.
    J. Lipid Res., 59(7), 1283-1293 (2018).
    doi: 10.1194/jlr.D083014.
  67. Obata Y, Kita S*, Koyama Y, Fukuda S, Takeda H, Takahashi M, Fujishima Y, Nagao H, Masuda S, Tanaka Y, Nakamura Y, Nishizawa H, Funahashi T, Ranscht B, Izumi Y, Bamba T, Fukusaki E, Hanayama R, Shimada S, Maeda N, Shimomura I.
    Adiponectin/T-cadherin system enhances exosome biogenesis and decreases cellular ceramides by exosomal release.
    JCI Insight, 3(8), e99680 (2018).
    doi: 10.1172/jci.insight.99680.
  68. Nishiumi S*, Izumi Y, Yoshida M*.
    Alterations in docosahexaenoic acid-related lipid cascades in inflammatory bowel disease model mice.
    Dig. Dis. Sci., 63(6), 1485-1496 (2018).
    doi: 10.1007/s10620-018-5025-4
  69. Tamura S, Koike Y, Takeda H, Koike T, Izumi Y, Nagasaka R, Tsunoda T, Tori M, Ogawa K, Bamba T, Shiomi M*.
    Ameliorating effects of D-47, a newly developed compound, on lipid metabolism in an animal model of familial hypercholesterolemia (WHHLMI rabbits).
    Eur. J. Pharmacol., 822, 147-153 (2018).
    doi: 10.1016/j.ejphar.2018.01.013
  70. Bowden J A*, Heckert A, Ulmer C Z, Jones C M, Koelmel J P, Abdullah L, Ahonen L, Alnouti Y, Armando A, Asara J M, Bamba T, Barr J R, Bergquist J, Borchers C H, Brandsma J, Breitkopf S B, Cajka T, Cazenave-Gassiot A, Checa A, Cinel M A, Colas R A, Cremers S, Dennis E A, Evans J E, Fauland A, Fiehn O, Gardner M S, Garrett T J, Gotlinger K H, Han J, Huang Y, Neo A H, Hyötyläinen T, Izumi Y, Jiang H, Jiang H, Jiang J, Kachman M, Kiyonami R, Klavins K, Klose C, Köfeler H C, Kolmert J, Koal T, Koster G, Kuklenyik Z, Kurland I J, Leadley M, Lin K, Maddipati K R, McDougall D, Meikle P J, Mellett N A, Monnin C, Moseley M A, Nandakumar R, Oresic M, Patterson R, Peake D, Pierce J S, Post M, Postle A D, Pugh R, Qiu Y, Quehenberger O, Ramrup P, Rees J, Rembiesa B, Reynaud D, Roth M R, Sales S, Schuhmann K, Schwartzman M L, Serhan C N, Shevchenko A, Somerville S E, John-Williams L S, Surma M A, Takeda H, Thakare R, Thompson J W, Torta F, Triebl A, Trötzmüller M, Ubhayasekera S J K, Vuckovic D, Weir J M, Welti R, Wenk M R, Wheelock C E, Yao L, Yuan M, Zhao X H, Zhou S.
    Harmonizing Lipidomics: NIST Interlaboratory Comparison Exercise for Lipidomics using Standard Reference Material 1950–Metabolites in Frozen Human Plasma.
    J. Lipid Res., 58(12), 2275-2288 (2017).
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  71. Sakamoto T, Sakuradani E*, Okuda T, Kikukawa H, Ando A, Kishino S, Izumi Y, Bamba T, Shima J, Ogawa J.
    Metabolic engineering of oleaginous fungus Mortierella alpina for high production of oleic and linoleic acids.
    Bioresour. Technol., 245, 1610-1615 (2017).
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  72. Fujito Y, Hayakawa Y, Izumi Y, Bamba T*.
    Importance of optimizing chromatographic conditions and mass spectrometric parameters for supercritical fluid chromatography/mass spectrometry.
    J. Chromatogr. A, 1508, 138-147 (2017).
    doi: 10.1016/j.chroma.2017.05.071
  73. Ogawa T, Izumi Y, Kusumoto K, Fukusaki E, Bamba T*.
    Wide target analysis of acylglycerols in miso (Japanese fermented soybean paste) by supercritical fluid chromatography coupled with triple quadrupole mass spectrometry and the analysis of the correlation between taste and both acylglycerols and free fatty acids.
    Rapid Commun. Mass Spectrom., 31(11), 928-936 (2017).
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  74. Suzuki M, Nishiumi S, Kobayashi T, Sakai A, Iwata Y, Uchikata T, Izumi Y, Azuma T, Bamba T, Yoshida M*.
    The use of on-line SFE-SFC/MS/MS to analyze disease biomarkers in dried serum spots compared with serum analysis using LC/MS/MS.
    Rapid Commun. Mass Spectrom., 31(10), 886-894 (2017).
    doi: 10.1002/rcm.7857
  75. Nagata M, Izumi Y, Ishikawa E, Kiyotake R, Doi R, Iwai S, Omahdi Z, Yamaji T, Miyamoto T, Bamba T, Yamasaki S*.
    Intracellular metabolite β-GlucosylCeramide is an endogenous Mincle ligand possessing immunostimulatory activity.
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  76. Minami S, Yamamoto T, Takabatake Y*, Takahashi A, Namba T, Matsuda J, Kimura T, Kaimori J, Matsui I, Takeda H, Takahashi M, Izumi Y, Bamba T, Matsusaka T, Niimura F, Isaka Y.
    Lipophagy maintains energy homeostasis in the kidney proximal tubule during prolonged starvation.
    Autophagy, 16, 1-19 (2017).
    doi:10.4155/bio-2016-0234
  77. Takeda H, Izumi Y, Tomita A, Koike T, Shiomi M, Fukusaki E, Matsuda F, Bamba T*.
    Lipoprotein profiling methodology based on determination of apolipoprotein concentration.
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    doi:10.4155/bio-2016-0234
  78. Takeda H, Koike T, Izumi Y, Yamada T, Yoshida M, Shiomi M, Fukusaki E, Bamba T*.
    Lipidomic analysis of plasma lipoprotein fractions in myocardial infarction-prone rabbits.
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    High-throughput simultaneous analysis of pesticides by supercritical fluid chromatography coupled to high-resolution mass spectrometry.
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    MRM-DIFF: Data Processing Strategy for Differential Analysis in Large Scale MRM-based Lipidomics Studies.
    Frontiers in Genetics, 5, Article number 471 (2015).
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    Supercritical fluid extraction as a preparation method for mass spectrometry of dried blood spots.
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    Practical evaluation of liquid chromatography/tandem mass spectrometry and enzyme immunoassay method for the accurate quantitative analysis of prostaglandins.
    J. Biosci. Bioeng., 118(1), 116-118 (2014).
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    Direct conversion of Spirulina to ethanol without pretreatment or enzymatic hydrolysis processes.
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  84. Izumi Y, Aikawa S, Matsuda F, Hasunuma T, Kondo A*.
    Aqueous size-exclusion chromatographic method for the quantification of cyanobacterial native glycogen.
    J. Chromatogr. B Analyt. Technol. Biomed. Life Sci., 930, 90-97 (2013).
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  85. Hasunuma T*, Kikuyama F, Matsuda M, Aikawa S, Izumi Y, Kondo A.
    Dynamic metabolic profiling of cyanobacterial glycogen biosynthesis under conditions of nitrate depletion.
    J. Exp. Bot., 64(10), 2943-2954 (2013).
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  86. Okada T, Fukuda S, Hase K, Nishiumi S, Izumi Y, Yoshida M, Hagiwara T, Kawashima R, Yamazaki M, Oshio T, Otsubo T, Inagaki-Ohara K, Kakimoto K, Higuchi K, Kawamura Y, Ohno H, Dohi T*.
    Microbiota derived lactate accelerates colon epithelial cell turnover in starvation-refed mice.
    Nat. Commun., 4, Article number 1654 (2013).
    doi: 10.1038/ncomms2668
  87. Ohira H*, Fujioka Y, Katagiri C, Mamoto R, Aoyama M, Izumi Y, Nishiumi S, Yoshida M, Usami M, Ikeda M.
    Butyrate attenuates inflammation and lipolysis generated by the interaction of adipocytes and macrophages.
    J. Atherosclero. Thromb., 20(5), 425-442 (2013).
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  88. Kobayashi T, Nishiumi S, Ikeda A, Yoshie T, Sakai1 A, Matsubara A, Izumi Y, Tsumura H, Tsuda M, Nishisaki H, Hayashi N, Kawano S, Fujiwara Y, Minami H, Takenawa T, Azuma T, Yoshida M*.
    A novel serum metabolomics-based diagnostic approach to pancreatic cancer.
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    Application of ion mobility-mass spectrometry to microRNA analysis.
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  90. Lai P, Okazawa A*, Izumi Y, Bamba T, Fukusaki E, Yoshikawa M, Kobayashi A.
    Effect of gallic acid on peptides released by trypsin digestion of bovine α-casein.
    J. Biosci. Bioeng., 115(3), 259-267 (2013).
    doi: 10.1016/j.jbiosc.2012.10.003
  91. Lai P, Okazawa A*, Izumi Y, Bamba T, Fukusaki E, Yoshikawa M, Kobayashi A.
    Gallic acid oxidizes Met-residues in peptides released from bovine β-lactoglobulin by in vitro digestion.
    J. Biosci. Bioeng., 114(3), 297-305 (2012).
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  92. Nishiumi S, Kobayashi T, Ikeda A, Yoshie T, Kibi M, Izumi Y, Okuno T, Hayashi N, Kawano S, Takenawa T, Azuma T, Yoshida M*.
    A novel serum metabolomics-based diagnostic approach for colorectal cancer.
    PLoS ONE, 7(7), e40459 (2012).
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  93. Sakai A, Nishiumi S, Shiomi Y, Kobayashi T, Izumi Y, Kutsumi H, Hayakumo T, Azuma T, Yoshida M*.
    Metabolomic analysis to discover candidate therapeutic agents against acute pancreatitis.
    Arch. Biochem. Biophys., 522(2), 107-120 (2012).
    doi: 10.1016/j.abb.2012.03.025
  94. Yoshie T, Nishiumi S, Izumi Y, Sakai A, Inoue J, Azuma T, Yoshida M*.
    Regulation of the metabolite profile by an APC gene mutation in colorectal cancer.
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    doi: 10.1111/j.1349-7006.2012.02262.x
  95. Aikawa S, Izumi Y, Matsuda F, Hasunuma T, Chang JS, Kondo A*.
    Synergistic enhancement of glycogen production in Arthrospira platensis by optimization of light intensity and nitrate supply.
    Bioresour. Technol., 108, 211-215 (2012).
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    Widely targeted metabolic profiling analysis of yeast central metabolites.
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  97. Izumi Y, Takimura S, Yamaguchi S, Iida J, Bamba T, Fukusaki E*.
    Application of electrospray ionization ion trap/time-of-flight mass spectrometry for chemically-synthesized small RNAs.
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    Use of UPLC/TOF-MS with nozzle-skimmer fragmentation for comprehensive quantitative analysis of secondary metabolites in Arabidopsis thaliana.
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    Development of a method for comprehensive and quantitative analysis of plant hormones by highly sensitive nanoflow liquid chromatography-electrospray ionization-ion trap mass spectrometry.
    Anal. Chim. Acta, 648(2), 215-225 (2009).
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  101. Izumi Y, Kajiyama S*, Nakamura R, Ishihara A, Okazawa A, Fukusaki E, Kanematsu Y, Kobayashi A.
    High-resolution spatial and temporal analysis of phytoalexin production in oats.
    Planta, 229(4), 931-943 (2009).
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  102. Igarashi D*, Izumi Y, Dokiya Y, Totsuka K, Fukusaki E, Ohsumi C.
    Reproductive organs regulate leaf nitrogen metabolism mediated by cytokinin signal.
    Planta, 229(3), 633-644 (2009).
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  103. Nakamura R, Izumi Y, Kajiyama S, Kobayashi A, Kanematsu Y*.
    Line-Scanning Microscopy for Time-Gated and Spectrally Resolved Fluorescence Imaging.
    J. Biol. Phys., 34(1-2), 51-62 (2008).
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  104. Kajiyama S*, Shoji T, Okuda S, Izumi Y, Fukusaki E, Kobayashi A.
    A novel microsurgery method for intact plant tissue at the single cell level using ArF excimer laser microprojection.
    Biotechnol. Bioeng., 93(2), 325-31 (2006).
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総説等

  1. Kikukawa H, Watanabe K, Kishino S, Takeuchi M, Ando A, Izumi Y, Sakuradani E*.
    Recent trends in the field of lipid engineering.
    J. Biosci. Bioeng., 133(5), 405-413 (2022).
    doi: 10.1016/j.jbiosc.2022.02.001
  2. 和泉自泰*．
    次世代のメタボローム計測．
    生物工学, 99(5), 229-232 (2021).
    doi: 10.34565/seibutsukogaku.99.5_229
  3. 和泉自泰*．
    アルコール代謝研究の最新動向．
    生物工学，98(11), 622 (2020).
  4. 竹田浩章，和泉自泰，馬場 健史*．
    ω-3 脂肪酸含有脂質を識別する定量リピドーム解析技術．
    バイオインダストリー，37(10), 32-40 (2020).
  5. 和泉自泰*，馬場健史．
    超臨界流体クロマトグラフィー質量分析を基盤とした定量リピドーム分析法の開発．
    生物工学，98(9), 490-493 (2020).
  6. 和泉自泰*，中谷航太，秦康祐，原健士，松本雅記，馬場健史．
    ナノ液体クロマトグラフィー質量分析を基盤としたシングルセル分子フェノタイプ解析．
    J. Mass. Spectrom. Soc. Jpn., 68(2), 44-48 (2020).
    doi: 10.5702/massspec.S20-09
  7. 平山明由*，和泉自泰，松田史生，石川貴正，杉浦悠毅，鈴木隆弘．
    メタボロミクスにおける親水性代謝物解析．
    J. Mass. Spectrom. Soc. Jpn., 65(5): 195-198 (2017).
    doi: 10.5702/massspec.S17-47
  8.  中谷航太，和泉自泰，福崎英一郎，馬場 健史*．
    メタボローム解析の現状と新規分析技術の開発．
    G.I.Research, 24(4): 228-233 (2016).
    ISBN: 978-4-86550-193-3
  9. 高橋政友，和泉自泰，馬場 健史*．
    超臨界流体クロマトグラフィー／質量分析を用いたメタボリックプロファイリング．
    日本農薬学会誌，41(2): 260-266 (2016).
    doi: 10.1584/jpestics.W16-26.
  10. 竹田浩章，和泉自泰，馬場 健史*．
    超臨界流体クロマトグラフィーを用いた代謝物プロファイリング技術の開発と応用．
    生物工学，94(7): 405-408 (2016).
  11. 高橋政友，和泉自泰，馬場 健史*．
    超臨界流体テクノロジーのフードメタボロミクスへの応用．
    バイオインダストリー，32(10): 17-24 (2015).
    ISBN: 0910-6545
  12. 和泉自泰，福崎英一郎，馬場 健史*．
    超臨界流体抽出分離技術を用いたリピドーム解析手法の開発．
    オレオサイエンス，14(8): 329-335 (2014).
    doi: 10.5650/oleoscience.14.329
  13. 平川あずさ，渡邊昌*，和泉自泰，西海信，吉田優，五明紀春．
    玄米VS胚芽米．
    アンチ・エイジング医学，8(4) 586-591 (2012).
  14. 吉田優*，寺島禎彦，西海信，和泉自泰，東健．
    ガスクロマトグラフ質量分析計を用いたメタボローム解析による消化管疾患診断に向けて．
    分子消化器病，9(2), 22-27 (2012).
    ISSN: 1348995X
  15. Yoshida M*, Hatano N, Nishiumi S, Irino Y, Izumi Y, Takenawa T, Azuma T.
    Diagnosis of gastroenterological diseases by metabolome analysis using gas chromatography-mass spectrometry.
    J. Gastroenterol., 47: 9-20 (2012).
    doi: 10.1007/s00535-011-0493-8.
  16. 蓮沼誠久，藍川晋平，和泉自泰，近藤昭彦*．
    微細藻類によるバイオリファイナリー．
    生物工学，89(4): 181-183 (2011).

著書

  1. Yoshioka T, Izumi Y, Bamba T*.
    Determination method of acrylamide in beverages and foods by supercritical fluid chromatography/tandem mass spectrometry.
    Edited by Koolen, H., Mass Spectrometry for Food Analysis. Methods and Protocols in Food Science, Humana, New York, NY, USA, 281-292 (2022).
    ISBN 978-1-0716-2106-6 doi: org/10.1007/978-1-0716-2107-3_21
  2. 竹田浩章，和泉自泰，馬場健史*．
    第5章 ω-3 脂肪酸含有脂質を識別する定量リピドーム解析技術．
    オメガ3脂肪酸の技術と市場, (シーエムシー出版), (2021).
    ISBN 978-4-7813-1604-8
  3. 和泉自泰*.
    実践編①試料収集，サンプリング，7 培養細胞．
    メタボロミクス実践ガイド, (羊土社), 63-69 (2021).
  4. 中谷航太，和泉自泰，馬場健史．
    実践編②機器分析，Ⅰ汎用される機器分析のプロトコール，4 親水性代謝物のターゲットメタボローム分析．
    メタボロミクス実践ガイド, (羊土社), 104-111 (2021).
  5. 高橋政友，和泉自泰，平山明由*．
    実践編②機器分析，Ⅱ発展的な機器分析の紹介，9 イオンクロマトグラフィー質量分析 (IC/MS) を用いた陰イオン性代謝物の分析手法．
    メタボロミクス実践ガイド, (羊土社), 160-162 (2021).
  6. 松田史生*，和泉自泰，平山明由．
    応用・展望編，Ⅱ今後の取り組み，12 研究室間連携によるメタボロミクスFuture planの模索．
    メタボロミクス実践ガイド, (羊土社), 319-323 (2021).
  7. 和泉自泰*，馬場健史．
    1細胞メタボローム解析の現状
    医学のあゆみ, (医歯薬出版), 276(10), 927-932 (2021).
  8. 松本雅記*，秦康祐，和泉自泰，馬場健史（分担執筆）．
    Part II シングルセルでみる生命，第9章 質量分析計を基盤とするシングルセルプロテオミクス．
    シングルセル解析でなにがわかるか， (化学同人)，109-121 (2020).
  9. 和泉自泰*，馬場健史*（分担執筆）．
    第3章 分析の視点から，4. リピドミクスの展開．
    バイオイノベーションに向けて    ，（シーエムシー出版），88-97 (2019).
  10. Izumi Y, Takeda H, Bamba T*.
    Supercritical Fluid. In “Encyclopedia of Lipidomics”,
    Edited by Markus R. Wenk, Springer Netherlands, 1-3, (2016).
    ISBN 978-94-007-7864-1 doi: 10.1007/978-94-007-7864-1_99-1
  11. Takeda H, Izumi Y, Bamba T*.
    Supercritical Fluid Extraction: Modifier. In “Encyclopedia of Lipidomics”,
    Edited by Markus R. Wenk, Springer Netherlands, 1-3, (2016).
    ISBN 978-94-007-7864-1 doi: 10.1007/978-94-007-7864-1_101-1
  12. Takeda H, Izumi Y, Bamba T*.
    Supercritical Fluid Extraction: Carbon Dioxide. In “Encyclopedia of Lipidomics”,
    Edited by Markus R. Wenk, Springer Netherlands, 1-3, (2016).
    ISBN 978-94-007-7864-1 doi: 10.1007/978-94-007-7864-1_100-1
  13. 和泉自泰，竹田浩章，馬場 健史*（分担執筆）
    第3章 データの活用，2. 超臨界流体抽出分離技術を用いた代謝プロファイリング．
    ヘルスケアを支えるバイオ計測，（シーエムシー出版），24-30 (2016).
  14. Izumi Y*, Lavina WA, Putri SP (Sharing writing).
    Chapter 3: Sample Preparation.
    Mass Spectrometry-Based Metabolomics: A Practical Guide, CRC Press, Boca Raton, Florida, USA, 37-102 (2014).
  15. 和泉自泰，福崎英一郎*（分担執筆）．
    第3章 細胞内生体分子群の実測定量解析，8. ナノLC/MSを用いた代謝物微量解析．
    シングルセル解析の最前線    ，（シーエムシー出版），194-200 (2010).

特許

  1. 発明の名称: 分析容器、前処理方法、代謝物解析方法、タンパク質解析方法、及び質量分析方法
    発明者: 秦康祐，和泉自泰，馬場健史，中谷航太，高橋政友，油屋駿介，松本雅記，平藤衛
    出願番号: 特願2022-141782
    出願日: 2022年9月6日
    出願人: 国立大学法人九州大学、国立大学法人新潟大学、ヨダカ技研株式会社
  2. 発明の名称: 質量分析用標識組成物，代謝物の定量分析法，及び代謝物の動態解析法
    発明者: 脇村明夏里，寺内勉，馬場健史，和泉自泰，相馬悠希，高橋政友，中谷航太，秦康祐
    出願番号: 特願2019-090121
    公開番号: 特開2020-186953(P2020-186953A)
    出願日: 2019年5月10日
    出願人: 大陽日酸株式会社、国立大学法人九州大学
  3. 発明の名称: 脂質プロファイリングシステム，脂質プロファイリング方法，及び脂質プロファイリングプログラム
    発明者: 馬場健史，中尾素直，和泉自泰
    出願番号: 特願2019-033302
    公開番号: 特開2020-139755(P2020-139755A)
    出願日: 2019年2月26日
    出願人: 国立大学法人九州大学
  4. 発明の名称: メタボロームの分離方法
    発明者: 櫻井恵太，佛願道男，馬場健史，和泉自泰，中谷航太
    出願番号: 特願2018-210645
    出願日: 2018年11月8日
    出願人: 日立化成テクノサービス株式会社、国立大学法人九州大学
  5. 発明の名称: メタボローム分析用分離材及びメタボローム分析用カラム
    発明者: 櫻井恵太，佛願道男，馬場健史，和泉自泰，中谷航太
    出願番号: 特願2018-210643
    出願日: 2018年11月8日
    出願人: 日立化成テクノサービス株式会社、国立大学法人九州大学
  6. 発明の名称：標識代謝物の製造方法､代謝物の定量方法､及び標識代謝物製造キット
    発明者：寺内勉，脇村明夏里，馬場健史，和泉自泰，相馬悠希
    出願番号：特願2017-143639
    公開番号: 特開2019-24326(P2019-24326A)
    出願日：2017年 7月25日
    公開日：2019年2月21日
    出願人：大陽日酸株式会社、国立大学法人九州大学
  7. 発明の名称：順相・逆相カラムを備えた超臨界流体クロマトグラフとそれを用いた分析方法
    発明者：馬場健史，福崎英一郎，和泉自泰，内方崇人
    出願番号：特願2014-071597
    公開番号: 特開2015-194363(P2015-194363A)
    出願日：2014年3月31日
    公開日：2015年11月5日
    出願人：株式会社島津製作所、国立大学法人大阪大学

獲得資金

  1. JST ライフサイエンスデータベース統合推進事業統合化推進プログラム
    研究課題名: 次世代低分子スペクトルデータベースシンマスバンクの構築
    研究期間: 2023年度～2027年度 (2023.4～2028.3)
    研究代表者: 松田 史生 (研究分担者: 和泉自泰)
  2. JST-CREST 「データ駆動・AI駆動を中心としたデジタルトランスフォーメーションによる生命科学研究の革新」
    研究課題名: データ駆動進化医学で解く季節性うつと冬眠の代謝基盤
    研究期間: 2022年度～2027年度 (2022.10～2028.3)
    研究代表者: 柚木克之 (研究分担者: 和泉自泰)
  3. AMED 次世代がん医療加速化研究事業
    研究課題名: 劇症型NK白血病に対する新規治療標的システイン-GGT系・トランスフェリン(Tf)ーTf受容体の作用機序解明
    研究期間: 2022年度～2024年度 (2022.10～2025.3)
    研究代表者: 幸谷愛 (研究分担者: 和泉自泰)
  4. 科学研究費補助金 挑戦的研究 (萌芽)
    研究課題名: オルガネラメタボローム計測技術の開発
    研究期間: 2022年度～2024年度 (2022.6～2025.3)
    研究代表者: 和泉自泰
    課題番号: 22H05185
  5. 科学研究費補助金 学術変革領域研究(A) 計画研究 「生体防御における自己認識の「功」と「罪」」
    研究課題名: 自己分子の包括的同定と自己認識を介した免疫ネットワーク形成の理解
    研究期間: 2022年度～2026年度 (2022.6～2027.3)
    研究代表者: 和泉自泰
    課題番号: 22H05185
  6. 科学研究費補助金 基盤研究 (B) (一般)　
    研究課題名: 次世代メタボローム解析技術による代謝マップの拡張と機能未知遺伝子の包括的帰属
    研究期間: 2022年度～2024年度 (2022.4～2025.3)
    研究代表者: 和泉自泰
    課題番号: 22H01883
  7. 内閣府-ムーンショット型研究開発事業研究開発プロジェクト「2050年までに、人が身体、脳、空間、時間の制約から解放された社会を実現」
    研究課題名: バイオマーカー探索
    研究期間: 2020年度～2025年度 (2020.12～2025.11)
    研究代表者: 石黒 浩 (課題推進者: 和泉自泰)
  8. JST-未来社会創造事業 革新的な知や製品を創出する共通基盤システム・装置の実現
    研究課題名: 1細胞定量分子フェノタイプ解析に向けた微量試料自動前処理装置の開発
    研究期間: 2020年度～2022年度 (2020.11～2023.3)
    研究代表者: 和泉自泰
  9. 2020年度一般財団法人杉山産業科学研究所研究助成
    研究課題名: シングルセルメタボローム解析によるがん代謝研究
    研究期間: 2020年度 (2020.7～2021.3)
    研究代表者: 和泉自泰
  10. 2019年度理研－九大科学技術ハブ共同研究プログラム　
    研究課題名: トランスオミクス解析による大腸菌の様々な代謝阻害剤に対する適応進化過程の解析
    研究期間: 2019年度 (2019.11～2020.3)
    研究代表者: 和泉自泰
  11. 科学研究費補助金 基盤研究 (C) (一般)　
    研究課題名: 1細胞メタボローム・プロテオーム分析によるがん細胞株の分子フェノタイプ解析
    研究期間: 2019年度～2021年度 (2019.4～2022.3)
    研究代表者: 和泉自泰
    課題番号: 19K05167
  12. 科学研究費補助金 基盤研究 (C) (一般)　
    研究課題名: in vivo安定同位体標識代謝物を用いた定量メタボロミクス技術の開発
    研究期間: 2015年度～2017年度 (2015.4～2018.3)
    研究代表者: 和泉自泰
    課題番号: 15K06557
  13. 科学研究費補助金 若手研究 (B)　
    研究課題名: マルチターゲット脂質プロファイリングによる大腸がんの早期診断バイオマーカー探索
    研究期間: 2012年度～2014年度 (2012.4～2015.3)
    研究代表者: 和泉自泰
    課題番号: 24700455

招待講演

  1. 和泉自泰，次世代質量分析オミクス解析技術の開発と医学応用，Seminer in Translational Rheumatology and Immunology，Web，2023年3月10日．
  2. Yoshihiro Izumi, Development of integrated analysis technology for single cell mass spectrometry and imaging，第45回 日本分子生物学会年会，千葉，2022年11月30日．
  3. Yoshihiro Izumi, Comprehensive exploration of metabolite ligands recognized by immune sensors based on next-generation metabolomics technology，第95回 日本生化学大会，愛知，2022年11月10日．
  4. 和泉自泰，Nano-LC/MS による 1 細胞メタボロミクス・プロテオミクスの開発，第42回 キャピラリー電気泳動シンポジウム，山形，2022年10月27日．
  5. 和泉自泰，エクソソームの定量リピドーム解析，第3回 脂質駆動学術産業創生研究部会講演会，Web開催，2021年12月10日．
  6. Yoshihiro Izumi, Challenge to single-cell metabolome and proteome analyses, 第59回 日本生物物理学会年会，Web開催，2021年11月27日．
  7. Yoshihiro Izumi, Newly developed mass spectrometry-based analytical system for single-cell metabolomics and proteomics, The 29th Hot Spring Harbor International Symposium, Fukuoka, Japan, November 20, 2021.
  8. 和泉自泰，ナノ液体クロマトグラフィー質量分析を基盤としたシングルセル分子フェノタイプ解析法の開発，第94回 日本生化学会大会，Web開催，2021年11月5日．
  9. 和泉自泰，定量リピドーム分析によるエクソソーム解析，第15回 メタボロームシンポジウム，Web開催，2021年10月14日．
  10. 和泉自泰，質量分析を基盤とした神経幹細胞のマルチオミクス解析，第64回 日本神経化学会大会，Web開催，2021年10月1日．
  11. 和泉自泰，ナノ液体クロマトグラフィー質量分析を基盤としたシングルセル分子フェノタイプ解析，代謝統合オミクス 第2回 新学術計測セミナー，Web開催，2021年6月21日．
  12. 和泉自泰，親水性代謝物のワイドターゲットメタボローム分析のプロトコル，日本農芸化学会 2021年度大会シンポジウム，Web開催，2021年3月20日．
  13. 和泉自泰，ナノ液体クロマトグラフィー質量分析を基盤としたシングルセル分子フェノタイプ解析，CBI Annual Meeting 2020，Web開催，2020年10月27日．
  14. 和泉自泰，親水性代謝物のワイドターゲットメタボローム分析のプロトコル，日本農芸化学会 2021年度大会シンポジウム，Web開催，2021年3月20日．
  15. 和泉自泰，ナノ液体クロマトグラフィー質量分析を基盤としたシングルセル分子フェノタイプ解析，CBI Annual Meeting 2020，Web開催，2020年10月27日．
  16. 和泉自泰，次世代のメタボローム計測，生物工学会バイオ計測サイエンス研究部会2020 シンポジウム，Web開催，2020年8月24日．
  17. Yoshihiro Izumi, Inter-laboratory comparison of metabolite measurements for metabolomics data integration, The 29th Hot Spring Harbor International Symposium, Fukuoka, Japan, February 6, 2020.
  18. Yoshihiro Izumi, Next-generation metabolomics: Technological development and medical application, The 4th Symposium of the Inter-University Research Network for Trans-Omics Medicine, Tokushima, Japan, November 15, 2019.
  19. 和泉自泰，IC/MSによる次世代メタボローム分析法の開発，Thermo Fisher SCIENTIFIC IC-MSインハウスセミナー2019，大阪・2019年11月7日，東京・2018年11月12日．
  20. 和泉自泰，1細胞分子フェノタイプ解析に向けた基盤技術の創生，Single Cellome Co-Innovators’ Consortium 第1回 オープンフォーラムSingle cell analysis, いま・これから，神奈川，2019年9月20日．
  21. 和泉自泰，質量分析を基盤としたシングルセル分子フェノタイプ解析，第71回日本生物工学会大会，岡山，2019年9月17日．
  22. 和泉自泰，次世代メタボロミクスに向けた技術開発，JASIS 2019，千葉・2019年9月4日．
  23. 和泉自泰，シングルセル分子フェノタイプ解析に向けた基盤技術の創生，日本プロテオーム学会2019年大会 第70回日本電気泳動学会総会，宮崎，2019年7月26日．
  24. 和泉自泰，メタボロームデータの施設間比較の現状と今後の課題，第46回 BMSコンファレンス，北海道，2019年7月10日．
  25. 和泉自泰，メタボローム分析におけるコロナ検出器の活用法，Thermo Fisher SCIENTIFICコロナフォーラム，東京・2019年2月21日．
  26. 和泉自泰，定量における課題について，メタボロミクスワークショップ in九大，福岡・2018年12月7日．
  27. 和泉自泰，技術セミナー：メタボローム解析，新学術領域研究代謝統合オミクス（代謝アダプテーションのトランスオミクス解析）第1回若手合宿，静岡・2018年11月16日．
  28. 和泉自泰，SFC/MS/MSによるワイドターゲット定量リピドミクス分析，Waters MSフォーラム2018，大阪・2018年10月23日，東京・2018年10月25日．
  29. 和泉自泰，次世代型 PAL RTC によるメタボロミクス自動前処理システムの開発，第12回メタボロームシンポジウム，山形，2018年10月19日．
  30. 和泉自泰，シングルセル分子フェノタイプ解析に向けた基盤技術開発，第12回メタボロームシンポジウム，山形，2018年10月19日．
  31. 和泉自泰，高分解能質量分析とCompound Discovererを用いた新たな代謝物解析法の提案，Thermo Fisher SCIENTIFIC質量分析フォーラム2018，大阪・2018年7月27日，東京・2018年8月3日．
  32. 和泉自泰，馬場健史，次世代メタボローム解析に向けた新たなクロマトグラフィー質量分析技術の開発，第28回クロマトグラフィー科学会議，京都，2017年11月16日．
  33. 和泉自泰，超臨界流体クロマトグラフィー三連四重極型質量分析によるワイドターゲット定量リピドミクス分析法の開発，第11回メタボロームシンポジウム (日本Watersランチョンセミナー)，大阪，2017年11月14日．
  34. 和泉自泰，メタボロミクスとマトリックス効果，第9回LC/MSワークショップ，静岡，2017年10月27日．
  35. 和泉自泰，1細胞メタボロミクスに向けた基盤技術開発，第69回日本生物工学会大会，東京，2017年9月14日．
  36. 和泉自泰，次世代メタボロミクスの技術開発と医学応用，北海道大学消化器内科セミナー，札幌，2017年6月26日．
  37. 和泉自泰，イオンモビリティー質量分析によるオリゴ核酸の分離分析，Waters オリゴ核酸LC/MSセミナー，東京，2017年4月18日．
  38. 和泉自泰，次世代メタボロミクスの技術開発と医学応用，日本薬学会 第137年会，仙台，2017年3月27日．
  39. 和泉自泰，ライフ分野におけるLC/MS/MSの活用法　～メタボロミクス～，鹿児島大学医学部ライフセミナー，鹿児島，2017年1月24日．
  40. 和泉自泰，超臨界流体クロマトグラフィー三連四重極型質量分析によるワイドターゲット定量リピドミクス分析手法の開発，Waters MSフォーラム2016，大阪・2016年10月5日，東京・2016年10月7日．
  41. 和泉自泰，メタボロミクスの技術開発と医学応用，沖縄質量分析セミナー，沖縄科学技術大学院大学OIST・2016年8月9日，琉球大学医学研究科及び琉球大学機器分析支援センター・2016年8月10日．
  42. 和泉自泰，イオンクロマトグラフィー高分解能質量分析による高精度メタボローム解析システムの開発，Thermo SCIENTIFIC質量分析フォーラム2016，大阪・2016年8月2日，東京・2016年8月4日．
  43. 和泉自泰，次世代メタボロミクスの技術開発と応用，第76回 分析化学討論会，岐阜薬科大学・岐阜大学，岐阜，2016年5月28日．
  44. Yoshihiro Izumi, Highly-sensitive, accurate, and rapid measurement of low molecular weight compounds by utilizing supercritical fluid extraction and separation technologies, 2016 The 5th Shimadzu International Collaborative Laboratory Forum, Taipei, Taiwan, March 2, 2016.
  45. 和泉自泰，次世代メタボロミクス解析手法の開発と応用，第2回メタボロミクスミニシンポジウム，大分大学医学部医学系研究科，大分，2016年2月5日．
  46. Yoshihiro Izumi, Eiichiro Fukusaki, Takeshi Bamba, Supercritical fluid chromatography triple-quadrupole mass　spectrometry-based methodology for highly-sensitive and high-throughput analysis of multiresidue pesticides, Pacifichem 2015, Honolulu, Hawaii, USA, December 17, 2015.
  47. 和泉自泰，SFC/MSのメタボロミクスへの応用，第2回メタボロシンポジウム若手会，静岡，2015年10月2日．
  48. 和泉自泰，馬場健史，イオンクロマトグラフィー高分解能質量分析による新規メタボローム解析システムの開発，Thermo SCIENTIFICイオンクロマトグラフセミナー，東京・2015年9月29日，大阪・2015年10月1日．
  49. 和泉自泰，SFC/MSを用いた残留農薬分析，第12回SFC研究会，東京，2015年2月6日．
  50. 和泉自泰，超臨界流体クロマトグラフィー質量分析の代謝プロファイリングへの応用，高分子分析研究懇談会第374回例会，京都，2014年9月11日．
  51. 和泉自泰，安定同位体標識化合物を用いた代謝ターンオーバー解析，第147回質量分析関西談話会（代謝フラックス解析），大阪，2014年8月9日．
  52. 和泉自泰，バイオマーカー探索法，第1回メタボロシンポジウム若手会，福岡，2013年10月5日．
  53. 和泉自泰，メタボローム分析法のこれまでとこれから，第5回バイオアナリシス研究会，神戸，2012年5月1日．

受賞

  1. SHIMADZU GLOBAL INNOVATION SUMMIT 2017, Poster Award, 2017年7月4日
  2. 第67回日本生物工学会大会トピックス賞，2015年10月26日
  3. 8th International Conference on Packed Column SFC, BEST Poster Award First Place，2015年7月24日
  4. 第63回質量分析総合討論会ベストプレゼンテーション賞，2015年6月19日
  5. 生物工学若手研究者の集い生物工学会特別賞，2009年7月5日

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